Перейти к содержимому

Сравнительный лейкоцитарный профиль крови Emys orbicularis (Reptilia: Emydidae) из двух популяций

ВВЕДЕНИЕ

Болотная черепаха Emys orbicularis внесена в Красный список МСОП с категорией таксона, находящегося в состоянии, близком к угрожаемо­му - «Near Threatened» (NT) (Red List., 2020). Восточная часть ареала заходит в речные бассей­ны Волги и Урала, где вид представлен популяция­ми гаплолинии I номинативного подвида E. o. or­bicularis (Дуйсебаева и др., 2019; Lenk etal., 1999 ). Адаптации этой наиболее широко распространен­ной внутривидовой формы (Joos et al., 2017) к раз­личным природно-географическим условиям отя­гощаются в настоящее время возрастающим прес­сом антропогенных и климатических изменений на среду обитания.

Исследования крови особей, представляющих отдельные популяции болотной черепахи, но­сят разрозненный и фрагментарный характер (Ло­бода, 1998; Большакова, Бакиев, 2005; Байрамбекова и др.., 2017; Alder, Huber, 1923; Duguy, 1967; Lukakis, Haritos, 1973; Lukakis, 1974; Musquera et al., 1976; Palomeque et al., 1977; Vasse, Beaupain, 1981; Ugurta et al., 2003; Metin et al., 2006; Colagar, Jafari, 2007; Arikan, Cicek, 2010; Javanbakht et al., 2013). Между тем гематологические исследова­ния предоставляют ценный диагностический ма­териал для мониторинга состояния природных популяций при решении природоохранных задач и совершенствовании методов регуляции числен­ности эктотермных животных. Сравнительные ис­следования физиологических показателей здоровых и больных черепах являются весьма информа­тивными при оценке состояния здоровья этих животных как из природных популяций, с целью со­хранения их численности, так и содержащихся в неволе, при их лечении (Васильев, 2016; Bolten, Bjorndal, 1992; Hasbun et al., 1998; Knotkova et al., 2002; zvegy etal., 2015).

Актуальность нашего исследования опреде­ляется и необходимостью изучения эколого-физиологических особенностей природных популяций болотных черепах, позволяющих им выживать и расширять ареал, важных для решения фундамен- тальных и прикладных вопросов о роли иммунных реакций и системы крови в адаптации к изменяющимся условиям среды обитания.

Целью работы являлась сравнительная оценка лейкоцитарного профиля болотной чере­пахи из популяций Уральского бассейна (Орен­бургская область) и Волжского бассейна (Астра­ханская область).

МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ

Объектами исследования явились полово­зрелые особи болотной черепахи, добытые в Рос­сийской Федерации: Оренбургской области (Беля­евский район, окрестности участка «Буртинская степь» Оренбургского заповедника; 16 - 17 июня 2020 г.; 16 особей - 11 самок и 5 самцов) и Астраханской области (Красноярский район, окрестности пос. Комсомольский; 27 - 29 августа 2020 г.; 48 особей - 28 самок и 20 самцов).

Все работы проводились в соответствии с «Международными руководящими принципами для биомедицинских исследований на животных» (International Guiding..., 2012). Кровь у черепах брали путем прокола хвостовой вены. После взя­тия крови все особи были возвращены в места от­лова. Мазки крови (по два от каждой особи) гото­вили с помощью гематологического штапеля, вы­сушивали на воздухе, затем фиксировали в спирто-эфирной смеси (1:1). Зафиксированные мазки хранили до окрашивания при комнатной темпера­туре. Мазки окрашивали в течение 20 мин краси­телем Гимза азур-эозин по Романовскому (10-12 - кратный раствор (фирма «Биолот», Россия), при­готовленном на фосфатном буфере (рН 6.8 - 7.2). Готовые мазки просматривали на микроскопе Meiji Techno серии МТ 4000 с иммерсией, при увеличении x1500 («Meiji Techno», Япония) с дифференцированным подсчётом лейкоцитов (Соколина и др., 1997; Alleman et al., 1992). С уче­том морфологических особенностей определяли пять типов лейкоцитарных клеток (в %): грануло­циты (гетерофилы, базофилы, эозинофилы) и агранулоциты (моноциты, лимфоциты). Цифровые изображения препаратов выполняли камерой Vi­sion САМ («Vision», Япония) для тринокулярного микроскопа Meiju Techno с использованием инте­грированного адаптера и разъема С-mount (уве­личение x1500).

На основании лейкоцитарной формулы кро­ви рассчитали интегральные лейкоцитарные ин­дексы в относительных единицах:

  • индекс сдвига лейкоцитов, ИСЛ = Х гранулоцитов / Хагранулоцитов;
  • индекс соотношения лимфоцитов и эозинофилов, ИСЛЭ=Л/Э;
  • индекс соотношения гетерофилов и эозинофилов, ИСГЭ = Г/Э;
  • лимфоцитарно-гранулоцитарный индекс, ИЛГ=Л«10/Э+Г+Б;
  • индекс соотношения гетерофилов и лимфоцитов, ИСГЛ=Г/Л,

где Л - лимфоциты, Э - эозинофилы, Г - гетеро­филы, Б - базофилы.

Измеряли длину карапакса (в мм) черепах по его прямой средней линии от переднего края загривкового щитка до заднего конца шва между надхвостовыми щитками штангенциркулем.

Данные сравнивали методами непараметри­ческой статистики с расчетом критериев: Краске-ла-Уоллиса (H) (при множественном сравнении независимых групп по одному признаку), Данна (D) (множественный критерий при по-парном сравнении групп), Манна - Уитни (u) при сравне­нии двух групп в пакете прикладных программ «Статистика», критерием z при сравнении долей. За величину статистической значимости принимали а = 0.05.

РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ

Морфологическую дифференциацию лейкоцитарных клеток проводили на основе ранее опубликованных описаний (Соколина и др., 1997; Alleman et al., 1992; Campbell, 2006; Metin et al., 2006; Perpinan, Sanchez, 2009; Cicek et al., 2015 и др.). К гранулоцитам относили гетерофилы, эози­нофилы и базофилы. Наиболее крупными грану­лоцитами являлись гетерофилы. Они имели одно темноокрашенное ядро овальной или круглой формы, расположенное эксцентрически. Цито­плазма (за исключением области вокруг ядра) окрашивалась от бледно-сиреневого цвета до оранжевого и содержала в различном количестве овальные или веретеновидные гранулы разного размера.

Эозинофилы были представлены крупными клетками с эксцентрически расположенным ядром овальной или эллипсовидной формы. Вся цитоплазма в клетке заполнена круглыми, одинаково окрашивающимися эозинофильными гранулами. По сравнению с гранулами гетерофилов гранулы эозинофилов окрашивались слабее.

Базофилы представляли собой круглые клетки среднего размера. Ядро круглое, распола­галось в центре клетки, имело однородный тем­ный хроматин. Крупные округлые гранулы окра­шивались с разной интенсивностью и часто полностью скрывали ядро.

Среди агранулоцитов дифференцировали два типа клеток: моноциты и лимфоциты. Моноциты - крупные округлые клетки. Ядро большое дольчатое, имело светлый хроматин. Цитоплазма серо-голубая, часто с мелкими гранулами. Лимфо­циты были представлены клетками разного раз­мера. В центре малых лимфоцитов располагалось темно-синее интенсивно окрашенное ядро, окру­женное небольшой зоной синей цитоплазмы. В крупных лимфоцитах круглое ядро было локали­зовано в определенной области клетки, цито­плазма бледно-голубого цвета занимала больший объем.

Преобладающими клетками в периферической крови болотных черепах из Оренбургской об­ласти являлись лимфоциты. Среди гранулоцитов доминировали гетерофилы. Статистически значимых половых различий в лейкоцитарном составе периферической крови этой выборки не выявлено (табл. 1).

Таблица 1. Сравнительный анализ лейкоцитарного состава периферической крови самцов и самок Emys orbicularis из Оренбургской области

Отсутствие различий в количественных показателях формулы крови и интегральных лейкоцитарных индексах самцов и самок свидетельствовало о сопоставимом уровне воздействия и идентичности физиологических механизмов адаптации, протекающих в организме болотных черепах оренбургской выборки.

В периферической крови болотных черепах из Астраханской области доминирующими клетками также являлись малые и большие лимфо­циты. Однако среди гранулоцитов в крови самок и самцов преобладали базофилы. Анализ лейкоцитарных формул выявил внутривидовые межпо­ловые различия, проявляющиеся в повышенном содержание моноцитов в крови самцов по сравне­нию с самками (u= 3.13, р= 0.001) (табл. 2). Моно­циты являются крупными мононуклеарными клетками, выполняют фагоцитирующую, анти­генпрезентирующую функции, продуцируют эн­догенные регуляторы иммунного ответа (Coico et al., 2003). Полученные результаты свидетельство­вали об активации естественного иммунитета самцов астраханской выборки. Статистически значимых различий по количественному содержа­нию в крови гранулоцитов и интегральным лейко­цитарным индексам между самками и самцами астраханской выборки не обнаружено.

Можно заметить, что средняя длина карапакса самок (156.7±8.93 мм) и самцов (154.0±6.06 мм) из оренбургской выборки статистически значимо не различались (u = 0.39, р = 0.69), а в астраханской выборке по средней длине карапакса самки (130.0±6.73 мм) были мельче (u = 2.45, р = 0.01) самцов (154.0±2.50 мм). Межполовые раз­личия подтверждались и непараметрическим кри­терием корреляции (ассоциации) Спирмана. Уме­ренную ассоциацию с качественным признаком (полом особи) обнаружили моноциты (r = 0.34, R2 = 0.12, p = 0.0008) и средняя длина карапакса (r = 0.35, R2 = 0.12, p = 0.0007). Самцы из двух вы­борок не различались как по размерам (u = 0.08, р = 1.00), так и доле моноцитов в лейкограмме (u = 0.79, р = 0.99).

Колебание физиологических показателей отдельных компонентов иммуногематологической системы при онтогенезе и под воздействием разнообразных факторов позволяет сохранить функциональную целостность всего организма эктотермных животных как сложной биологической системы в постоянно изменяющихся условиях среды. Поэтому при анализе иммуногематологических параметров особое внимание следует обратить на системные показатели, включающие результат взаимодействия нескольких компонентов. В этой связи представлялось интересным изучить взаимозависимость между морфологическими и гематологическими показателями болотных черепах. Методом регрессионного анализа показана статистически значимая корреляция количества эозинофилов, моноцитов и лимфоцитов в периферической крови с размерами тела черепах (табл. 3).

Таблица 2. Сравнительный анализ лейкоцитарного состава периферической крови самцов и самок Emys orbicularis из Астраханской области

Таблица 3. Связь количественныхпоказателей формулы крови с размерами тела Emys orbicularis

В свою очередь, анализ полученных зависимостей показал, что примерно на 13% (показатель детерминации R2 = 0.13) дисперсия содержания эозинофилов в крови объясняется дисперсией раз­мера тела болотных черепах. Для моноцитов и лимфоцитов этот показатель детерминации был еще меньше: 0.072 и 0.076 соответственно, и толь­ко на 7% дисперсия содержания в крови агранулоцитов объяснялась размерами тела. Получен­ный результат показывает, что при анализе и оце­нивании адаптационных возможностей организма наряду с простыми детализированными показате­лями полезно иметь в виду и зависимости одного признака от одного или нескольких других признаков (количественных или качественных).

Сравнительный анализ лейкоцитарного профиля болотных черепах из разных популяций выявил различия по содержанию как гранулоцитов, так и агранулоцитов. Самцы оренбургской выборки отличались от самцов астраханской выборки повышенной долей гетерофилов и пониженным содержанием базофилов. Самки обеих выборок различались по всем показателям формулы крови, кроме эозинофилов, доля которых была одинакова. В периферической крови самок оренбургской выборки выявлено более высокое содержание гетерофилов, моноцитов и пониженное содержание базофилов и лимфоцитов по сравнению с самками астраханской выборки (табл. 4).

Лейкоцитарные клетки периферической крови рептилий ответственны за проявление как реакций естественного иммунитета (гетерофилы, базофилы и эозинофилы), так и адаптивного им­мунного ответа (лимфоциты). По изменениям со­отношения разных типов лейкоцитов под воздей­ствием внутренних или внешних факторов судят о состоянии и функциональной активности иммунного реагирования организма (Arican, Cicek, 2014). Полученные результаты свидетельствова­ли об активации естественного иммунитета самок и самцов оренбургской выборки по сравнению с самками астраханской выборки. Известно, что невысокое содержание базофилов в периферической крови повышается при поступлении в организм дополнительных антигенов. На мембране этих клеток содержатся антиген-специфические рецепторы, активация которых приводит к дегрануля­ции базофилов и выбросу гистамина в ответ на поступление антигена в организм, что вызывает формирование воспалительной реакции и реализа­цию основных функций врожденного иммуни­тета рептилий. Процесс зависит от концентрации антигена и температуры (Sypek et al., 1984). Повышенная доля базофилов в крови самок и самцов астраханской выборки могла быть вызвана разными причинами: загрязнением среды обитания, заболеваниями или кровепаразитарными инвазиями (Васильев, 2016).

Таблица 4. Сравнительный анализ лейкоцитарного состава периферической крови самцов и самок Emys orbicularis в выборках из двух популяций

Информативными интегральными показателями реактивности организма являются интегральные индексы: ИСЛ, ИСЛЭ, ИСГЭ, ИЛГ и ИСГЛ. Так, известно, что увеличение соотноше­ния гетерофилов к лимфоцитам наряду с другими изменениями в формуле крови свидетельствует о развитии стрессорных реакций в организме животных (Davis et al., 2008). Более высокое значе­ние индекса ИСГЛ у особей оренбургской выбор­ки может свидетельствовать о дополнительном стрессовом воздействии на болотных черепах.

Известно, что различные характеристики окружающей среды (температура, скорость течения, рН среды и т. д.) могут повлиять на возникновение, распространенность и интенсивность заболеваний и инвазий животных (Marcogliese, Co­ne, 1997). При проведении гематологического ана­лиза в периферической крови черепах обеих вы­борок были выявлены измененные эритроциты удлиненной формы с эксцентрическимия драми. В цитоплазме этих эритроцитов обнаруживались гемопаразиты. По внутриклеточному расположе­нию, внешнему виду, форме и морфологии гемопаразиты соответствовали роду Haemogregarina из семейства Haemogregarinidae (Мкртчян, 1966; Telford, 2009). Хорошо известно, что представители данного рода инфицируют рептилий в качес­тве промежуточных хозяев (Siddall, Desser, 1992; Ozvegy et al., 2015), и различные стадии жизненного цикла гемопаразита развиваются в эритроцитах периферической крови черепах, обитающих в пресных водах (Мкртчян, 1966; Olsen, 1986; Ozvegyetal., 2015) (рис. 1).

Сравнительный анализ распространеннос­ти гемопаразитов в обеих выборках показал, что в астраханской выборке было больше незараженных самок. Отметим, тем не менее, что в литературе имеются данные о преимущественном поражении гемопаразитами самок по сравнению с самцами (Molla et al., 2013). В целом по выборке доли зараженных и незараженных гемопарази­тами особей статистически значимо не различа­лись. В оренбургской выборке распространён­ность Haemogregarina sp. среди самок и самцов была одинаковой, но при этом в целом по выборке доля зараженных особей оказалась выше по сравнению с астраханскими черепахами (табл. 5).

Вопрос об изменении гематологических по казателей у рептилий при инвазии остается открытым, что связано, в первую очередь, с отсутствием показателей условной нормы для различных ви­дов в зависимости от возрастных, половых и се­зонных особенностей. Анализ литературных све­дений показывает, что болотные черепахи, инфицированные Haemogregarina stepanowi, имели бо­лее низкие значения гематокрита, гемоглобина, эритроцитов по сравнению с незараженными особями (Ozvegy et al., 2015). Ряд авторов отмечают изменение формы и размера эритроцитов при инвазиях (Мкртчян, 1966; Хайрутдинов, Соколина, 2010). Имеются данные о повышении в крови содержания плазматических клеток, гетерофилов, азурофилов и лимфоцитов ящериц, в крови которых зафиксированы паразиты (Хайрутдинов, Соколина, 2010).

Рис. 1. Haemogregarina sp.: U-образной формы в эритроците болотной черепахи, хорошо видно эксцентрично смещенное ядро эритроцита

Таблица 5. Встречаемость гемопаразитов в эритроцитах Emys orbicularis в выборках из двух популяций

По нашим данным, в астраханской выборке лейкоцитарный профиль самцов болотных черепах с инвазией и без инвазии не различался. Напротив, в лейкограммах самок болотных черепах с гемопаразитами в эритроцитах (9 особей) установлено повышенное содержание моноцитов (u =  2.67, р= 0.007) и гетерофилов (u= 2.02, р= 0.04) по сравнению с лейкограммами самок без гемопаразитов (14 особей). Высокий показатель индекса ИСГЛ для самок с гемопаразитами (Me =  0.30, IQR = 0.20) ( u= 2.34, р= 0.01) обуслов­ливался приростом в периферической крови доли гетерофилов.

В целом по выборке астраханских черепах лейкоцитарные профили зараженных и незараженных особей различались содержанием гетерофилов (u= 2.08, p= 0.03), моноцитов (u= 2.63, p = 0.008) и лимфоцитов (u= 2.34, p= 0.018). В крови особей с гемопаразитами выявлено повышенное содержание гетерофилов, моноцитов и снижение доли лимфоцитов (рис. 2).

Рис. 2. Изменения лейкоцитарного состава крови Emys orbicularis астраханской выборки при наличии в эритроцитах гемопаразитов: 1 - без гемопаразитов, 2 - с гемопаразитами

Таким образом, наличие гемопаразитов в эритроцитах сопровождалось изменением показателей крови болотных черепах. При этом в крови уменьшалось содержание лимфоцитов и увеличивалось количество гетерофилов и моноцитов. Картина крови является симптоматическим отражением патологического процесса, протекающего в организме животного при инвазии гемопаразитами, и характеризует биологические взаимоотношения паразит - хозяин. Лейкоцитарные показатели крови, в первую очередь гетерофилы и лимфоциты, указывают на иммунную реактивность организма хозяина, которая находится под влиянием многочислен ных факторов внешней среды и всевоз можных патогенных агентов. Развиваясь в организме болотных черепах, гемопаразиты как биологический раздражитель оказывают на него стрессорное воздействие, формы которого разнооб­разны и зависят от совокупности биологических и физиологических процессов, происходящих при инвазионных болезнях, а также от защитных свойств и ответных реакций организма хозяина. Гематологическим параметром развития стресса (Davis et al., 2008) у болотных черепах с гемопаразитами в эритроцитах крови можно считать и повы­шенное значение интегрального лейкоцитарного индекса ИСГЛ (u= 2.66, p=  0.007) по сравнению с особями без гемопаразитов.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Сутью аутэкологических исследований является выявление факторов и механизмов функционирования и адаптации организмов в посто­янно изменяющихся условиях среды на уровне видов. Такой подход необходим как для изуче­ния разных популяций одного вида, так и экоси­стем, элементами которых являются виды. В адаптации организмов к условиям среды, возникающих при воздействии экстремальных факто­ров, в том числе и при инвазионных болезнях, непосредственно участвует система крови, обеспечивающая важнейшие гомеостатические функции организма. Несмотря на имеющиеся литературные данных по изучению гематологических и биохимических показателей, практиче­ски отсутствуют исследования по сравнительно­му анализу адаптивных реакций системы крови и различий со стороны иммунной системы у болотных черепах, обитающих в близких и качественно различных условиях среды.

Преобладающими лейкоцитарными клетками в периферической крови болотных черепах являлись лимфоциты (40 - 45%). Среди гранулоцитов доминировали гетерофилы (оренбургская выборка), обеспечивающие реакции неспецифической естественной защитной системы организма, или базофилы (астраханская выборка), обладающие высокоспецифичными функциями, связанными с активным высвобождением гистамина при поступлении антигенов. У болотных черепах оренбургской выборки межполовых различий по лейкоцитарным показателям не выявлено. Периферическая кровь самцов болотных черепах по сравнению с самками (астраханская выборка) характеризовалась повышенным содержанием моноцитов, что иллюстрировало активацию естественного иммунитета.

Анализ лейкоцитарного состава крови болотных черепах выявил количественно-качественные изменения в иммунологических показателях при инвазии гемопаразитами. При этом снижалась специфическая иммунная реакция (содержание лимфоцитов), что компенсировалось повышением неспецифической защитной системы (содержание гетерофилов). Поддержание иммунологической реактивности организма болотных черепах в условиях инвазии определялось функциональной активностью гетерофилов, что подтверждалось более высоким значением индекса ИСГЛ.

Полученные данные расширяют наши представления о закономерностях изменения общей реактивности организма болотных черепах и путях адаптации на уровне системы крови. Хорошо известно, что большинство изменений в организме, если не напрямую детерминированы влиянием иммунологических факторов, то являются иммунно-опосредованными (Галактионов, 2004). Иммунологические взаимоотношения организма со средой обитания являются результатом воздействия, с одной стороны, антигенов, а с другой - распознавания и реагирования на эти антигены иммунной системы организма. Любые воздействия, изменяющие иммунологическую реактивность организма животных, в том числе инвазионные болезни, могут нарушать формирование сложных механизмов обеспечения гомеостатического равновесия между организмом и средой обитания.

Благодарности

Авторы признательны кандидату биологических наук, доценту, старшему научному сотруднику Волжско-Камского государственного природного биосферного заповедника Алексею Владиленовичу Павлову за консультации при определении гемопаразитов в эритроцитах болотных черепах.

Список литературы

Байрамбекова С. А., Абдурахманова П. П., Магомедкамилова Р. И. 2017. Кислотная и осмотическая устойчивость эритроцитов крови различных популяций болотной черепахи (Emys orbicularis) Дагестана // Известия Самарского научного центра РАН. Т. 19, № 2 (2). С. 220 - 223.
Большакова О. Е., Бакиев А. Г. 2005. Випроциты в крови пресмыкающихся Волжского бассейна (предварительное сообщение) // Актуальные проблемы герпетологии и токсинологии. Тольятти. Вып. 8. С. 5 - 7.
Васильев Д. Б. 2016. Ветеринарная герпетология. М. : Аквариум-Принт. 420 с.
Галактионов В. Г. 2004. Иммунология. М. : Издательский центр «Академия». 528 с.
Дуйсебаева Т. Н., Доронин И. В., Малахов Д. В., Кукушкин О. В., Бакиев А. Г. 2019. ГИС-анализ распространения и условий обитания Emys orbicularis orbicularis (Testudines, Emydidae) : методические аспекты // Известия высших учебных заведений. Поволжский регион. Естественные науки. № 1. С. 28 - 40.
Лобода Е. И. 1998. Морфологические и цитохимические особенности клеток белой крови у представителей некоторых видов холоднокровных позвоночных // Вестник зоологии. Т. 32, № 3. С. 54 - 57.
Мкртчян З. А. 1966. Материалы к изучению паразитов крови рептилий Армении // Биологический журнал Армении. Т. XIX, № 10. С. 92 - 100.
Соколина Ф. М., Павлов Ф. В., Юсупов Р. Х. 1997. Гематология пресмыкающихся. Методическое пособие по курсу герпетология, большому практикуму и спецсеминарам. Казань : Казан. ун-т. 31 с.
Хайрутдинов И. З., Соколина Ф. М. 2010. Характеристика крови рептилий и ее связь с условиями обитания. Казань : Казан. ун-т. 44 с.
Alder A, Huber E. 1923. Untersuchungen uber Blutzellen and Zellbildung bei Amphibien und Reptilien // Folia Haematologica. Bd. 29. S. 1 - 22.
Alleman A. R., Jacobson E. R., Raskin R. E. 1992. Morphologic and cytochemical characteristics of blood cells from the desert tortoise (Gopherus agassizii) // American Journal of Veterinary Research. Vol. 53. P. 1645 - 1651.
Arikan H., Cicek K. 2010. Morphology of peripheral blood cells from various species of Turkish herpetofauna // Acta Herpetologica Vol. 5, № 2. P. 179 - 198.
Arican H., Cicek K. 2014. Haematology of amphibians and reptiles : A review // North-Western Journal of Zoology. Vol. 10, iss. 1. P. 190 - 209.
Bolten A. B., Bjorndal K. A. 1992. Blood profilies for a wild population of green turtles (Chelonia mydas) in the southern Bahamas : Size-specific and sex-specific relationships // Journal of Wildlife Diseases. Vol. 28. P. 407 - 413.
Campbell T. W. 2006. Clinical pathology of reptiles // Reptile Medicine and Surgery / ed. D. R. Mader. St. Louis, MO : Saunders Elsevier. P. 453 - 470.
Cicek K., Arikan H., Ayaz D. 2015. Blood cell morphology and erythrocytes count of two freshwater turtles, Emys orbicularis and Mauremys rivulata, from Turkey // Ecologia Balkanica. Vol. 7, iss. 1. P. 21 - 27.
Coico R., Sunshine G., Benjamini E. Immunology : A Short Course. Hoboken : Wiley-Liss Publications, 2003. 500 p.
Colagar H., Jafari N. 2007. Red blood cell morphology and plasma proteins electrophoresis of the European pond terrapin Emys orbicularis // African Journal of Biotechnology. Vol. 6, № 13. P. 1578 - 1581.
Davis A. K., Maney D. L., Maerz J. C. 2008. The use of leukocyte profiles to measure stress in vertebrates: A review for ecologists // Functional Ecology. Vol. 22. P. 760 - 772.
Duguy R. 1967. Le cycle annuel des e'le'ments figure's dus sang chez Emys orbicularis L., Lacerta muralis Laur., et Natrix maura L. // Bulletin de la Societe Zoologique de France. Vol. 92. P. 23 - 37.
Hasbun C. R., Lawrence A. J., Naldo J., Samour J. H., AlGhais S. M. 1998. Normal blood chemistry of freeliving green sea turtle Chelonia mydas from the United Arab Emirates // Comparative Haematology International. Vol. 8. P. 174 - 177.
International Guiding Principles for Biomedical Research Involving Animals. 2012. Geneva, Switzerland : Council for International Organization of Medical Sciences Publ. 4 p.
Javanbakht H., Vaissi S., Parto P. 2013. The morphological characterization of the blood cells in the three species of turtle and tortoise in Iran // Research in Zoology. Vol. 3, № 1. P. 38 - 44.
Joos J., Kirchner M., Vamberger M., Kaviani M., Rahimibashar M. R., Fritz U., Muller J. 2017. Climate and patterns of body size variation in the European pond turtle, Emys orbicularis // Biological Journal of the Linnean Society. Vol. 20. P. 1 - 15.
Knotkova Z., Doubek J., Knotek Z., Hajkova P. 2002. Blood cell morphology and plasma biochemistry in Russian tortoises (Agrionemys horsfieldi) // Acta Veterinaria, Brno. Vol. 71. P. 191 - 198.
Lenk P., Fritz U., Joger U., Wink M. 1999. Mitochondrial phylogeography of the European pond turtle, Emys orbicularis (Linnaeus, 1758) // Molecular Ecology. Vol. 8, iss. 11. P. 1911 - 1922.
Lukakis J. J. 1974. A phylogenetic study on turtle hemoglobins // Comparative Biochemistry and Physiology. Part B : Biochemistry and Molecular Biology. Vol. 48. P. 231 - 240.
Lukakis J. J., Haritos A. A. 1973. Electrophoretic and antigenic properties of turtle myoglobins // Comparative Biochemistry and Physiology. Part B : Biochemistry and Molecular Biology. Vol. 46. P. 117 - 122.
Marcogliese D., Cone D. R. 1997. Parasite communities as indicators of ecosystem stress // Parassitologia. Vol. 6. P. 65 - 89.
Metin K, Turkozan O, Kargin F., Koca Y. B., Taskavak E., Koca S. 2006. Blood Cell Morphology and Plasma Biochemistry of the Captive European Pond Turtle Emys orbicularis // Acta Veterinaria, Brno. Vol. 75, iss. 1. P. 49 - 55.
Molla S. H., Bandyopadhyay P. K., Gurelli G. 2013. On the Occurrence of a Haemogregarinae (Apicomplexa) Parasite from Freshwater Turtles of South 24 Parganas, West Bengal, India // Turkiye Parazitoloji Dergisi. Vol. 37. P. 118 - 122.
Musquera S., Massegu J., Planas J. 1976. Blood proteins in turtles (Testudo hermanni, Emys orbicularis and Caretta caretta) // Comparative Biochemistry and Physiology. Part A : Physiology. Vol. 55. P. 225 - 230.
Olsen O. W. 1986. Animal Parasites : Their Life Cycles and Ecology. New York : Dover Publication. 564 p.
Ozvegy J., Marinkovic D., Vucicevic M, Gajic B., Stevanovic J., Krnjaic D., Aleksic-Kovacevic S. 2015. Cytological and molecular identification of Haemogregarina stepanowi in blood samples of the European pond turtle (Emys orbicularis) from quarantine at Belgrade Zoo // Acta Veterinaria (Beograd). Vol. 65, iss. 4. P. 443 - 453.
Palomeque J., Sese P., Planas J. 1977. Respiratory properties of the blood of turtles // Comparative Biochemistry and Physiology. Part A : Physiology. Vol. 57. P. 479 - 483.
Perpinan D., Sanchez C. 2009. Morphologic and cytochemical characteristics of blood cells from the European pond turtle (Emys orbicularis) and mediterranean pond turtle (Mauremys leprosa) // Journal of Herpetological Medicine and Surgery. Vol. 19, № 4. P. 119 - 127.
Red List (Version 2020-3). 2020. URL: https:// www.iucnredlist.org/ (дата обращения: 27.01.2020).
Siddall M. E., Desser S. S. 1992. Prevalence and intensity of Haemogregarina balli (Apicomplexa ; Adeleina ; Haemogregarinidae) in three turtle species from Ontario, with observations on interaerythrocytic development // Canadian Journal of Zoology. Vol. 70, № 1. P. 123 - 128.
Sypek J. P., Borysenko M., Findlay S. R. 1984. Antiimmunoglobulin induced histamine release from naturally abundant basophils in the snapping turtle, Chelydra serpentine // Developmental and Comparative Immunology. Vol. 8, iss. 2. P. 359 - 366.
Telford S. R. 2009. Hemoparasites of the Reptilia : Color Atlas and Text. Boca Raton : CRG Press. 376 p.
UgurtasI. H, SevincM., Yildirimhan H. S. 2003. Erythrocyte size and morphology of some tortoises and turtles fromTurkey // Zoological Studies. Vol. 42, № 1. P. 173 - 178.
Vasse J., Beaupain D. 1981. Erythropoiesis and haemoglobin ontogeny in the turtle Emys orbicularis L. // Journal of Embryology and Experimental Morphology. Vol. 62. P. 129 - 138.


Е. Б. Романова¹, И. А. Столярова¹, А. Г. Бакиев², Р. А. Горелов²
1 Национальный исследовательский Нижегородский государственный университет им. Н. И. Лобачевского
Россия, 603950, г. Нижний Новгород, просп. Гагарина, д. 23
2 Самарский федеральный исследовательский центр РАН, Институт экологии Волжского бассейна РАН Россия, 445003, г. Тольятти, ул. Комзина, д. 10

СОВРЕМЕННАЯ ГЕРПЕТОЛОГИЯ. 2021. Т. 21, вып. 1/2. С. 30 - 42

Источник: cyberleninka.ru

⇓ Скачать PDF "Современная герпетология" сборник со статьями про черепах (25 мб)